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品牌 | 其他品牌 | 貨號 | 3D Gel /3D Gel-RGD |
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規格 | 10ml/瓶 | 供貨周期 | 現貨 |
應用領域 | 醫療衛生,化工,生物產業,制藥 |
NANOLAB 3D Gel™即用型 3D細胞培養水凝膠
產品介紹:
即用型 3D 細胞培養水凝膠
產品描述和規格
3D Gel™ 為無動物源性多糖水凝膠體系,模仿天然細胞外基質(ECM) 環境。水凝膠為即用型中性 pH 溶液,室溫即可穩定保存。使用時,只需與細
胞培養基混合即可形成水凝膠基質。水凝膠顏色透明,具有可滲透性,相容 于多種細胞成像系統。培養在水凝膠系統的細胞可在試驗后輕松收獲,水凝 膠也可注射,非常適合體內研究。3D Gel 為細胞創造一個具功能性且優 化的環境,讓細胞感覺在家一樣。從 2D 凝膠培養,3D 細胞培養到動物注射, 3D Gel 提供一個可以同時適用于體外研究與活體實驗的共通操作平臺。 TheWell 有兩種水凝膠系統:
3D Gel – 適用于懸浮細胞系
3D Gel-RGD(RGD 肽修飾的 3D Gel)– 適用于貼壁細胞
應用說明:
產品: 3D Gel (Cat#: NANO001)
3DGel-RGD (Cat#: NANO002)
3D細胞培養
(可注射水凝膠制備)
材料:
3D Gel,細胞培養基,微量移液器或注射器,細胞培養孔板,細胞, 37 ?C 水浴
方法:
1. 在 37?C 預熱 3D Gel 溶液和細胞培養基。
2. 向 4mL 3D Gel 溶液中加入 1mL 細胞懸液,使用微量移液器(或 快速渦旋振蕩)輕輕混勻,盡量不要產生氣泡。(對于水凝膠注射:混合 物可轉移到注射器,水凝膠在穩定 15-30 分鐘后即可用于注射。)
3. 將水凝膠混合液轉移至細胞培養孔板。
注:傾斜/旋轉培養板,以確保水凝膠在培養板上包被均勻。
不同細胞板的推薦體積如下表:
4. 等待 15 分鐘至水凝膠穩定。
5. 小心加入細胞培養基以覆蓋水凝膠溶液。
6. 將細胞培養板加入培養箱,每 48 小時換液
注:
l 預熱 3D Gel 溶液有助于降低溶液粘度。
l 終細胞濃度可根據不同細胞類型調整。我們推薦 2×105 to 1×106。
2D 凝膠培養
材料:
3D Gel,細胞培養基或 PBS,微量移液器,細胞培養孔板,細胞,37 ?C 水浴
方法:
1. 在 37 ?C 預熱 3D Gel 溶液和細胞培養基。
2. 向 4mL VitroGel 3D 溶液中加入 1mL 細胞培養基(或 PBS),使用微量 移液器(或快速渦旋振蕩)輕輕混勻,盡量不要產生氣泡。
3. 將水凝膠混合液轉移至細胞培養孔板。
注:傾斜/旋轉培養板,以確保水凝膠在培養板上包被均勻。
4. 等待 15 分鐘至水凝膠穩定。
5. 吸出多余液體,小心將細胞加到水凝膠頂部。
6. 將細胞培養板加入培養箱,每 48 小時換液。
注:
l 預熱 3D Gel 溶液有助于降低溶液粘度。
l 終細胞濃度可根據不同細胞類型調整。
NANOLAB 3D Gel™即用型 3D細胞培養水凝膠
初次使用說明
(請在使用產品前仔細閱讀)
請根據不同的細胞系和培養基組分優化 VitroGel 3D 水凝膠系統,以得到更
好的結果。初次使用用戶,強烈建議培養不同的細胞系時,都進行水凝膠濃 度梯度測試。
請參照以下步驟設置水凝膠濃度梯度:
1. 稀釋:可通過稀釋水凝膠溶液調節終水凝膠強度:直接將水凝膠溶液 與去離子水或 0.1X PBS(不含鈣或鎂離子)以 1:0-1:5(水凝膠溶液: 去離子水,v/v)室溫混合。(終膠強度 1:0 > 1:1 > 1:2 > 1:3 > 1:4 > 1:5)
2. 成膠:稀釋的水凝膠溶液和細胞培養基不同的混合比例會影響成膠速度 及終的膠強度。推薦的混合比例為 4:1-1:3(稀釋的水凝膠:細胞培養 基, v/v)。
l 相同稀釋度的水凝膠溶液,添加越多細胞培養基,成膠越快。 對于稀釋度較高的水凝膠溶液(eg. 1:3, 1:4 or 1:5),請使用較多 的細胞培養液混合,以確保水凝膠在合理的時間內成膠。
l 不同細胞培養基的推薦混合比例,請參考下表。
活/死細胞分析
材料:
培養于 3D Gel 系統中的細胞,活/死細胞染色液,PBS,微量移液器, 熒光顯微鏡
方法:
1. 移去覆蓋于水凝膠之上的細胞培養基,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
2. 用 PBS 制備 5X 活/死細胞染色溶液
3. 將活/死細胞染色溶液直接加入到水凝膠中并淹沒整個凝膠。推薦體積如 下表:
4. 在黑暗中孵育 5 分鐘,在熒光顯微鏡下觀察。
注:
l 推薦使用 5X 染色液作為起始濃度。可基于不同細胞系和成像系統優化 更佳濃度。
l 細胞染色后應盡快分析
細胞收獲:
材料:
培養于 3D Gel 系統中的細胞,0.1XPBS 或去離子水,離心管,微量移
液器,37?C 水浴,漩渦震蕩儀
方法:(使用 24 孔板,250μL 膠/孔為例)
1. 在 37℃水浴預熱 0.1X PBS(或去離子水)及空的離心管。
2. 由培養箱取出細胞培養板,棄掉覆蓋于水凝膠頂部的培養基。
3. 每孔加入 1 mL 預熱的 0.1X PBS,并上下吹打以*混勻。
4. 將混合物加入預熱的離心管。
5. 用 1 mL 預熱的 0.1X PBS 潤洗每個孔,并加入離心管中。
6. 上下吹打,充分混勻,并加入預熱的 0.1X PBS 至 10mL。
7. 將離心管漩渦震蕩 5-10 秒,并在 37℃水浴放置 1-5 分鐘(可選)。
8. 1,000 rpm 離心 2-5 分鐘,棄上清,收集細胞沉淀。
9. 用預熱的 0.1X PBS 重懸細胞,如果需要可重復 6-8 步驟一次(可選)。
注:
l 使用預熱的 0.1X PBS 或去離子水,不要使用冷的溶液或 1X PBS(或 高離子濃度的細胞培養基)。
l 根據不同細胞系優化離心的速度和時間。
熒光染色:
材料:
培養于 3D Gel 系統中的細胞,PBS,微量移液器,固定液(4%甲醛 PBS 溶液),滲透液(0.1% Triton X-100 PBS 溶液),肌動蛋白抑制劑染色液,細 胞核染色液,微量移液管,熒光顯微鏡。
方法:
1. 移去覆蓋于水凝膠之上的細胞培養基,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
2. 將固定液加入水凝膠中,并在室溫孵育 30 分鐘。
3. 棄去固定液,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
4. 加入滲透液并淹沒整個凝膠,置于室溫 5 分鐘。
5. 棄去滲透液,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
6. 加入肌動蛋白抑制劑染色液,室溫,黑暗孵育 1 小時。
7. 棄去肌動蛋白抑制劑染色液,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
8. 加入細胞核染色液,室溫,黑暗孵育 5 分鐘。
9. 棄去細胞核染色液, 并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
10. 熒光顯微鏡下觀察。
注:
l 根據產品使用說明配制染色液。可根據不同細胞系和水凝膠調節染色液 終濃度。
l 在清洗步驟中,小心添加或移除溶液,以避免損失水凝膠/細胞。
l 孵育時間可根據不同細胞系調整。
l 水凝膠加入染色液后,應避免光照。
l 確保 PBS 沖洗步驟*,同時水凝膠在整個過程中都需要溶液覆蓋。
組織學分析:
材料:
培養于 3D Gel 系統中的細胞,PBS,卡夾,石蠟,二甲苯,固定液(10% 福爾馬林),乙醇(50-100%)
方法:
1. 移去覆蓋于水凝膠之上的細胞培養基,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次
2. 將固定液加入水凝膠中,并在室溫孵育 30 分鐘。
3. 棄去固定液,并用 PBS 沖洗水凝膠 3 次。
4. 將水凝膠放于卡夾中,用乙醇,按照以下順序脫水:
50%(10 分鐘) - 70%(10 分鐘) - 80%(10 分鐘) - 95%(10 分鐘) - 100%(10 分鐘) - 100%(10 分鐘) - 100%(10 分鐘)。
5. 將乙醇換為二甲苯,按照以下順序脫水:
65%乙醇:35%二甲苯(10-15 分鐘)-50%乙醇+50%二甲苯(10-15 分鐘)- 35%乙醇+65%二甲苯(10-15 分鐘) - 100%二甲苯(10-15 分鐘) - 100%二甲苯(10-15 分鐘) - 100%二甲苯(10 分鐘)
6. 將二甲苯換為石蠟,按照以下順序:
65%二甲苯+35%石蠟(30 分鐘) - 50%二甲苯+50%石蠟(30 分鐘) -
35%二甲苯+65%石蠟(30 分鐘) - 100% 石蠟 (1-2 小時) - 100% 石 蠟(1-2 小時或過夜)
7. 嵌入新鮮的石蠟中后,切片,放于顯微鏡載玻片上。
8. 根據不同的應用進行染色和組裝。
注:
l 根據不同細胞系和水凝膠大小優化孵育時間。確保水凝膠在整個過程中 都被溶液覆蓋。
表 B:不同細胞的推薦稀釋比例和混合比例
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